我們知道WB實驗步驟繁瑣，一次實驗歷時也不短，從提蛋白到顯影結(jié)束可能要三天，我們就講一下這里面的一些關(guān)鍵環(huán)節(jié)。

一、蛋白提取及變性

1、提取蛋白 很多經(jīng)驗豐富的WB實驗者都深有體會，蛋白提取是影響結(jié)果最重要的環(huán)節(jié)之一。該過程最重要的是防降解和保證蛋白濃度不要太低。防降解主要有兩點，一是裂解前注意保持樣品處于低溫環(huán)境中，二是裂解時加入足夠的蛋白酶抑制劑。我們習慣先用冰冷的PBS做心臟的體循環(huán)灌注，然后冰上取腦，分離各腦區(qū)（嗅球，皮層，海馬，中腦，小腦，延髓，丘腦，紋狀體）后置于1.5EP管中，用液氮速凍后轉(zhuǎn)移至-80度冰箱長期保存。接著是保證蛋白濃度，即要加入適量的裂解液，加太少會使蛋白提取不充分，加太多會讓蛋白濃度太低，一般經(jīng)驗是這樣的，細胞樣品例如一個六孔板的細胞加60微升的裂解液，動物組織的話每毫克組織加10微升裂解液。最好還要加上超聲破碎處理，具體方案見?討論部分。如果沒有超聲破碎儀，那就用1毫升注射器不斷抽吸，冰上反復抽吸1分鐘左右，注意不要產(chǎn)生過多氣泡。（需要灌注取材的視頻可以私聊獲取，由于文件過大，又比較血腥，不宜直接放到文章里。）

2、蛋白變性 加入上樣緩沖液后100攝氏度煮10分鐘，這里的上樣緩沖液有兩種可選，一種是用beta巰基乙醇打開蛋白質(zhì)分子二硫鍵的，另一種是用DTT（二硫蘇糖醇）。兩者的作用是一樣的，但特點不一樣，前者更容易與氧氣反應，穩(wěn)定性比后者差，如果在常溫下暴露在空中，前者只能維持24小時的活性，后者卻可以維持7天左右。所以該如何選擇？如果是蛋白樣品較少，跑幾次就可以用完的樣品，這時選擇beta巰基乙醇。如果樣品很多，計劃跑上幾十次的，優(yōu)先選擇DTT,建議變性后分裝保存。

二、SDS-PAGE凝膠配制

1、配膠前準備 首先強調(diào)一下，一塊好的膠是跑好蛋白的前提，所以這個環(huán)節(jié)也不容忽視。玻璃板的選擇，一種是1毫米厚度的，另一種是1.5毫米的，這個厚度選擇也是有講究的，如果上樣體積小于10微升，優(yōu)先選1毫米，否則選1.5毫米的。原因是什么？答案在轉(zhuǎn)膜部分揭曉。還有分離膠的濃度也要選擇適合的。然后玻璃板和梳子要洗干凈，晾干。裝板，注意厚板和薄板的底部要對齊，否則會漏膠。加制膠的各成分前，要觀察液體是否有沉淀，有沉淀的盡量不要用。

2、制膠 按配方說明依次加入各組分，加完SDS后先簡單手動搖勻幾下，然后迅速加入過硫酸銨和TEMED,搖勻，緊接著就灌膠。然后我習慣用95%的酒精壓膠，我也用過純水，感覺純水壓沒那么好，由于水的密度較大，會把分界處的膠壓得膨大。靜置25分鐘后把酒精倒干，用吸水紙吸出多余的酒精，然后配壓縮膠，同樣的操作，關(guān)鍵是梳子要插得快，要小心梳子下產(chǎn)生氣泡，然后靜置30分鐘。如果是當天跑膠，我會等上層膠凝2個小時再用，但要注意防干燥縮水，可以在一個小時的時候沿著梳子上緣加點電泳液。所以我一般提前一晚制膠，泡于純水或者電泳液里置于4度冰箱暫存。

三、蛋白電泳

1、上樣前準備 把膠組裝到電泳芯上，注意密閉性（否則漏液），如果內(nèi)槽漏液就不是勻強電場了，最后條帶可能就不是一條直線。然后內(nèi)槽倒?jié)M電泳液，拔梳子，這一步要小心，梳子要兩邊一起緩緩往上拔出，然后觀?察泳道內(nèi)有無脫落的膠粒或者膠絲，有的話用1毫升注射器吸出。然后從冰箱取出蛋白樣品，解凍。準備振蕩器。

2、上樣和電泳 注意，上樣后蛋白會開始慢慢在膠中彌散，所以上樣越快越好。我習慣先上蛋白Marker,再上蛋白樣品，蛋白上樣前確保樣品完全解凍和充分振蕩（推薦使用振蕩器振蕩），吸的時候沒有拉絲即可，建議上樣前五分鐘把樣品從冰上取出來，不然樣品中SDS可能會結(jié)晶析出，從而影響電泳效果。上層膠80V 25分鐘，下層膠120V 65分鐘。

四、轉(zhuǎn)膜

1、轉(zhuǎn)膜前準備 我會在電泳結(jié)束前30分鐘準備，把轉(zhuǎn)膜液配好置于4度冰箱預冷，然后裁膜，準備轉(zhuǎn)膜裝置，準備碎冰和冰磚。最后把膜置于甲醇溶液中活化1分鐘，然后轉(zhuǎn)移至轉(zhuǎn)膜液中平衡3分鐘后備用。

2、轉(zhuǎn)膜 組裝轉(zhuǎn)膜三明治夾，這一步很關(guān)鍵，最重要的是膠和膜之間不能有氣泡且膜與膠要保證貼合緊密（否則會翻車），可以加多點轉(zhuǎn)膜液泡著。組裝好后加滿轉(zhuǎn)膜液，設(shè)置電源參數(shù)，我習慣恒流轉(zhuǎn)膜，200-280毫安，1-2小時，根據(jù)分子量定，如50KD的分子用60分鐘就夠了。如果一個電源帶兩個轉(zhuǎn)膜大槽即四塊膠，我就會用恒壓70-110V。這個過程最重要的是做好降溫。這里簡單說一下蛋白分子量與玻璃板厚度，分離膠的濃度，轉(zhuǎn)膜電源參數(shù)的選擇問題。如果是能用1毫米的玻?璃板就不用1.5毫米的，因為轉(zhuǎn)膜是在電場的作用下蛋白分子從膠上遷移到膜上，1毫米膠的蛋白遷移距離要比1.5毫米的短1/3。選擇更薄的膠蛋白轉(zhuǎn)膜時間可以減少，從而減少發(fā)熱，以免膠變形，條帶也會更好看。然后是分離膠的濃度，如果是150—200KD的分子選10% 以下的的分離膠，200—300KD的選8%的,300KD以上的選6%的，小于30KD的200mA 30分鐘，30-100KD的按分子量的數(shù)值算，如70KD，250mA 70分鐘；100-150KD的250mA 100分鐘；150—300KD的分子轉(zhuǎn)膜條件用280毫安(以上均是對于1.0mm的玻璃板來說的，1.5mm的要適當延長時間)，120分鐘足矣，前提是膠的濃度相適應。

五、封閉孵一抗

1、封閉 轉(zhuǎn)膜結(jié)束后，把膜先用TBST泡洗兩遍再用5%脫脂奶粉或者BSA室溫封閉1-2小時。注意一定要讓蛋白面充分接觸封閉液。

2、孵一抗 脫脂奶粉封閉?的話，要用TBST泡洗三遍再轉(zhuǎn)移至一抗溶液中，BSA封閉的可以直接轉(zhuǎn)移至一抗中。如果膜的寬（膜是一個長方形，這里的寬與長相對應）不大于8毫米，我習慣置于15毫升離心管中孵育，兩條膜"背對背"式放置于一個管子里（3毫升液體即可）。如果大于8毫米，就用普通的5格的一抗孵育盒（4毫升即可）。4度過夜，一般是12-18個小時，注意放置水平，最好用搖床。內(nèi)參等蛋白豐度很高的如果孵久了可能出現(xiàn)條帶連在一起的情況，這時可以縮短孵育時間或者降低一抗的濃度。

六、孵二抗顯影

1、孵二抗 室溫一個小時足矣。這步要注意的是建議用5%BSA或者脫脂奶粉稀釋二抗，這樣背景會干凈許多。也要注意膜的蛋白面要充分接觸二抗溶液，我們一般一條膜一個槽地孵。

2、顯影 這一步有個細節(jié)可能有些同學沒注意到，就是ECL發(fā)光液要與HRP反應一分鐘后顯影效果才會更好，還有要注意的是顯影液要均勻覆蓋，一般第二次顯影（加新的顯影液）比一次好看。